ОПТИМИЗАЦИЯ ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ ДЛЯ КУЛЬТУРЫ SCENEDESMUS SP. Ореховича РАН, Москва, 4. Магистр, ФГБОУ Московский политехнический университет, Москва. ОПТИМИЗАЦИЯ ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ ДЛЯ КУЛЬТУРЫ SCENEDESMUSSP. Аннотация. Исследовано влияние состава питательных сред для культивирования микроводорослей на примере микроводоросли Scenedesmussp. На примере основных составляющих элементов питательной среды Сетлик показано, что изменение концентрации компонентов позволяет получить более высокие показатели прироста биомассы, чем в контрольном варианте. Исследуемым параметром являлись концентрации минеральных солей питательной среды Сетлик – KNO3,  KH2.

• Альгин, увеличивает полевую всхожесть семян, а также способствует появлению. Музафаров А. М., Таубаев Т. Культивирование и применение .
• Установлено, что ряски поедаются утками на 150$, а курами - на 135$ ( по сравнению с люцерной). Музафаров A.M., Таубаев Т.Т., Абдиев М.
• В монографии описаны методы культивирования хлореллы, сценедесмуса и других .

PO4, Mg. SO4. Показателем оптимизации являлся прирост биомассы микроводорослей Scenedesmussp. Для обработки результатов использованы ротатабельные композиционные планы. Ключевые слова: Scenedesmussp., оптимизация питательной среды. Rotatable compositional plans were used to process the results.

Keywords: Scenedesmus sp., nutrient solution optimization, rotatable compositional plans. В настоящее время биомасса микроводорослей представляет большой интерес как один из ценных источников возобновляемого сырья для получения различных коммерчески значимых продуктов, используемых в химической, нефтехимической и пищевой промышленностях. Наиболее важным аспектом применения фототрофных микроводорослей является биоутилизация углекислого газа. Также внимание исследователей все больше привлекают микроводоросли как источник белков, углеводов, жиров, витаминов и других физиологически активных веществ. Особенно большой интерес представляют протококковые водоросли, такие как хлорелла и сценедесмус. Эти водоросли обладают способностью изменять качественное и количественное содержание органических соединений в клетках в зависимости, от условий выращивания, в том числе и общий прирост биомассы.

Карякин Д.О.¹, Мальцевская Н.В.², Новичева М.В.³, Кулабухов В.Ю.⁴. Музафаров А. М., Таубаев Т. Культивирование и применение . Количество его в расчете на сухое вещество достигает 4-6%, т.е. Музафаров А.М., Таубаев Т.Т. Ташкент: «Фан», 1974. Культивирование и применение . 1967) рекомендуют добавлять органические вещества в стандартные питателные среды для микроводорослей, а А.М. Музафаров и Т.Т. Таубаев (1974) .

Сценедесмус представляет большой интерес вследствие того, что данный род может выдерживать значительно более высокие концентрации углекислого газа, чем другие микроводоросли, а, следовательно, более перспективный для задач его биоутилизации. Химический состав интенсивно размножающихся культур сценедесмуса достаточно стабилен. Вместе с тем, обращает на себя внимание чрезвычайно высокая пластичность метаболизма сценедесмуса и его способность радикально менять направленность биосинтеза в зависимости от условий культивирования при различных воздействиях внешних факторов. Элементы питания — материальная и жизненная основа существования водорослей. При массовом культивировании микроводоросли сценедесмус обычно используются те же соли, что и при выращивании высших растений.

Литература: 1. Музафаров А.М. Таубаев Т.Т. Культивирование и применение микроводорослей. Узбекской ССР, 1984. Кругликова . Паламарь-Мордвинцевой Г.М. Музафаров А.М., Таубаев Т.Т. Методы массового культивирования и применение.

Однако протококковые водоросли, в отличие от высших растений, способны расти при различных концентрациях солей в питательном растворе. Состав питательных сред всегда известен, однако концентрацию её компонентов в ходе эксперимента можно варьировать. Для культивирования микроводорослей обычно используют минеральные питательные среды.

Подбор основных компонентов, которых является достаточно сложным и долгим процессом. Основные компоненты среды – источники углерода, азота, фосфора, серы, микроэлементов, ростовых факторов и витаминов для начала роста биомассы. Но даже когда основной выбор сделан, и уже известен состав среды, важно определить именно соотношение данных элементов. Мультфильмы В Формате Wmv здесь.

Это соотношение как раз и надо искать при оптимизации состава сред. Математические модели позволяют сократить время и снизить затраты затрачиваемые на подбор оптимального диапазона концентраций компонентов питательной среды, а также повысить качество полученных результатов . Для исследования была выбрана среда Сетлик 2. KNO3, 0. 3. 4 г/л KH2. PO4, 0. 9. 9 г/л Mg. SO4. Прирост биомассы определяли по оптической плотности с применением калибровочных графиков.

Прирост биомассы микроводорослей определяли по оптической плотности фотоэлектроколориметрически на ФЭК КФК 2 УХЛ 4. Стерилизацию среды осуществляли в автоклаве, режим 0,8 ати, 4. Каждый опыт по культивированию проводили в течение трех недель, при температуре 2. Результаты опытов подвергали статистической обработке: считали коэффициенты регрессии, а также проверяли его адекватность с использованием критериев Фишера. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕДля оптимизации  питательных сред существуют различные методы  – тотальный перебор на прямоугольной сетке, метод Гаусса- Зейделя, метод Бокса- Уилсона и т.

Тотальный перебор на прямоугольной сетке требует довольно большого числа экспериментов, соответственно высоких временных и материальных затрат. Метод Гаусса – Зейделя (последовательное изучение каждого фактора) требует поочередного выполнения серий экспериментов, так как изменение «фона» требует анализа результатов каждой серии – требует много времени и достаточно дорог. В методе Бокса- Уилсона планируемые опыты не приводят сразу к «тотальному» опыту.

В настоящей работе использовали метод математического планирования экспериментов – ротатабельные композиционные планы. Также к ядру плана добавляли дополнительные опыты – звездные точки. Для исследования влияния измененной питательной среды на культуру было произведено культивирование микроводорослей. Ядром плана являются опыты под номером 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7 и 8, которые представляют собой ПФЭ (полный факторный эксперимент) вида 2k. К точкам ПФЭ плана первого порядка были добавлены 2k  звездных точек, расположенных на осях факторного пространства на одинаковых расстояниях от центра плана- звёздное плечо, которое имеет радиус r. Далее к точкам  ПФЭ первого порядка добавляли несколько параллельных опытов в центре плана, чтобы сравнить показания относительно него (контрольная область). В таблице 1 в строках с 9 по 1.

Таблица 2 – Схема планирования эксперимента . Опыты по номером 2. После обработки результатов концентраций  были проведены расчеты и подобраны новые концентрации питательных солей (табл. Si(i) – значения шагов в крутом восхождении), проведен новый опыт по культивированию и получены следующие результаты, представленный в виде диаграммы (табл. Таблица 3 – Условия и результаты опыта по исследованию рассчитанных оптимальных концентраций (опыт 1. Таблица 5 – Условия и результаты повторного эксперимента (опыт 2. Далее было проведено сравнение прироста биомассы на питательной среде Сетлик с различными модификациями, (рис.

Данные сравнения показали эффективность полученной на этапе 2. Сетлик для процесса накопления биомассы водорослей Scenedesmussp. Рис. 1 – Сравнительные поэтапные (1. Сетлик с различным составом.

Сравнивая полученные данные прироста биомассы микроводорослей можно сделать вывод, что оптимизация питательной среды прошла успешно, так как полученные значения во много раз превышают значения в начале опыта. Выводы. Проведен эксперимент, в ходе которого был определен оптимальный состав питательной среды Сетлик для культивирования микроводорослей Scenedesmussp.

При обработке результатов использовали ротатабельные композиционные планы второго порядка, которые позволили более точно описать процесс. Показано, что применение оптимизированной питательной среды увеличивает прирост биомассы в два раза. Список литературы / References. Бирюков В. Основы промышленной биотехнологии.

М., Таубаев Т. Культивирование и применение микроводорослей //Ташкент: Фан Уз. ССР. 3. 17. 9- 3. Кулабухов В., Карякин Д., Мальцевская Н. Перспективы использования микроводорослей для поглощения СО2 из дымовых газов промышленных предприятий. Экология и промышленность России.

DOI: 1. 0. 1. 84. Систер В. Г., Иванникова Е. М., Плотников С. П., Чирков В.